Рыбоводство и Рыболовство 3/1980
Живой корм для личинок карпа
В. Буховец НИС Гидропроект


Для производства рыбопосадочного материала важное значение имеет организация кормления личинок в бассейнах живыми кормами. Сегодня мы предлагаем читателям две статьи, в которых рассказывается об экспериментах по подращиванию личинок рыб на науплиусах артемии салина.

Многочисленные исследования показали, что личинок карпа в первые Дни после выклева необходимо кормить живым кормом. В хозяйствах индустриального типа перспективным объектом культивирования может стать солоноватоводный рачок Artemia salina.

Преимущества его состоят а возможности длительного хранения яиц артемии, получении науплиусов в любые календарные сроки и относительно простой технологии получения живых рачков. На Электрогорской опытной базе ВНИИПРХа, где в 1977-1978 гг. проводились эксперименты по подращиванию личинок карпе до десятидневного возраста, использовался метод получения живых науплиусов артемии, разработанный М. Д. Астерманом и усовершенствованный нами применительно к производственным условиям.

Инкубационные емкости типа аппаратов Вейса устанавливали в изотермический ящик из двухслойной полиэтиленовой пленки (рис, 1). В них через воронку заливали 5-процентный раствор сернокислого натрия и помещали сухие яйца артемии из расчета 10 г на литр раствора, На самое дно каждой емкости для аэрации и перемешивания среды опускали абразивный распылитель, соединенный хлорвиниловой трубкой с компрессором ВК-1, укрепленным внутри ящика. Для поддержания постоянной температуры воды в инкубационных аппаратах внутри изотермического ящика устанавливали электронагревательный прибор, соединенный с контактным термометром. Мы использовали электроплитку с закрытой спиралью на подставке из огнеупорного материала.

При температуре воды в инкубаторе 25-27°С выклев науплиусов артемии начинается через сутки и длится 12-15 ч. После выклева основной массы рачков содержимое аппаратов приобретает оранжевую окраску, и в этот момент, через 30-35 ч с начала инкубации, необходимо отделить науплиусов от пустых оболочек яиц. Для этого содержимое аппаратов сливали в сачок-концентратор из сита с ячеёй не более 0,25 мм. Профильтрованную воду возвращали в инкубатор, а фильтрат переносили в делительную воронку с пресной водой, где после нескольких минут отстаивания пустые скорлупки и мертвые яйца плотным слоем собираются на поверхности, а науплиусы - у дна. Рачков вместе с нижним слоем воды сливали в концентратор и после взвешивания помещали в инкубатор.

При скармливании артемии оказалось, что первые 3-4 дня личинки карпа питаются только рачками, активно двигающимися в толще воды. Науплнусов, неподвижно лежащих на дне и стенках выростных емкостей, личинки не потребляют. Для того, чтобы все рачки приобрели свойственную им подвижность, после чистки их выдерживали в инкубаторе еще около 12 ч. Таким образом, науплиусы артемии полностью готовы к скармливанию через 48 ч с начала инкубации.

Время инкубации сокращается при повышении температуры воды в аппаратах до 30°С, однако при этом зачастую наблюдается массовая гибель выклюнувшихся науплиусов даже при интенсивной аэрации. Вероятно, в этом случае происходит интоксикация рачков продуктами метаболизма, накапливающимися в воде. По этой же причине использование воды из аппаратов для повторной инкубации нежелательно.

Применение нами этого метода инкубации яиц артемии в течение двух сезонов позволило устойчиво получать до 30 г сырых рачков с литра раствора.

Опыты по подращиванию личинок карпа размером 1,5-1,7 мм до десятидневного возраста проводились в круговых проточных емкостях объемом 2 и 20 л при плотности посадки 70 шт./л, постоянной температуре 27-29°С. Наблюдения в ходе опытов показали, что при кормлении личинок карпа живым кормом в проточных емкостях с водообменом 6 раз в час большинство кормовых организмов вымывается из емкости уже в первые 15 мин после начала кормления (см. табл.). В этих же емкостях без проточности практически весь корм, заданный в количестве 1 г на 1400 личинок, выедается за 30 мин. Гидрохимические анализы свидетельствуют, что даже при температуре воды 29°С снижение содержания кислорода в непроточных емкостях невелико и возможно прекращение водоподачи в них сроком до 1 ч (рис. 2).

На основании этих наблюдений, в дальнейшем во избежание перерасхода живых кормов из-за вымывания при каждом кормлении подача воды в выростные емкости прекращалась на 30 мин. За это время личинки карпа наполняют кишечники науплиусами и перестают активно питаться, поднимаясь к поверхности воды. Контролем за поедаемостью служит также отсутствие рачков в самом освещенном месте емкости. Разовую порцию корма желательно равномерно распределять по всей поверхности выростной емкости.

При температуре 27-29°С личинки вновь опускались в придонные слои и возобновляли активное питание, выедая за 30 мин порцию корма, равную предыдущей, через 2-2,5 ч. Этот период принимался нами за время переваривания, и следующее кормление проводилось через 3 ч после предыдущего.

В опытах личинок карпа кормили артемией 4-5 раз лишь в светлое время суток. При этом суточная норма составила от 6 г в первый день до 1 0 г в дальнейшем в расчете на 1000 личинок.

В выростных емкостях с водообменом 18 раз/ч при соблюдении изложенной технологии кормления и ежедневной чистке емкостей на пятые сутки подращивания личинки карпа достигают длины 10,5-10,7 мм и среднештучной массы 15-20 мг. При этом они имеют вполне развитый ротовой аппарат, позволяющий им захватывать малоподвижные и прикрепленные кормовые организмы. В это время личинки держатся преимущественно у дна и могут потреблять частицы искусственного корма диаметром около 0,5 мм. Это позволяет на шестые сутки переводить личинок на кормление только искусственным гранулированным кормом и получать 10-12-дневную молодь средней массой около 50 мг, при выходе не менее 75%.

Двухлетний опыт подращивания личинок карпа в бассейнах на живых кормах показал, что при использовании в качестве инкубаторов для яиц артемии стандартных аппаратов Вейса емкостью 8 л блок из трех таких аппаратов ежедневно обеспечивает живыми науплиусами артемии до 21 тыс. личинок карпа.

Для сокращения потерь живого корма в проточных емкостях целесообразно кратковременное отключение водоподачи при кормлении.

Совершенствование норм и режима кормления живыми организмами позволит ускорить срок перевода личинок карпа на искусственные гранулированные корма и улучшить рыбоводные и экономические результаты подращивания.



В условиях производства
Е. Гусев ВНИИПРХ

Яйца артемии, собранные осенью в местах обитания рачка и помещенные в соленую воду, дают весьма низкую величину выклева. Она колеблется от долей процента до 7-10%, Выклев же из перезимовавших яиц, собранных на тех же акваториях весной, значительно выше и достигает 75%, правда, снижаясь с увеличением продолжительности их хранения.

Очевидно, в течение осенне-весеннего периода находящиеся в природной обстановке яйца проходят процесс активации, в результате которого большинство яиц выходит из состояния покоя и приобретает способность к развитию.

Но зато осень - наиболее благоприятное время для массовых заготовок яиц. Поэтому потребовалась разработка методов искусственной активации покоящихся яиц артемии с целью доведения их до промышленных кондиций, предполагающих высокий, дружный и стабильный выклев.

Исследователи поставили перед собой задачу воспроизвести факторы, воздействующие на яйца в природе. Стали применять облучение их люминесцентными лампами, воздействовать на них высокочастотным электрическим и магнитным полями, обрабатывать различными химикатами.

В 1978 г. И. Б. Богатова и 3. И. Шмакова предложили принципиально новый метод активации яиц артемии. По этому методу расчет суммарного количества яиц артемии, необходимого для подращивания личинок рыб до требуемой массы, производят по формуле:

Х = К x N x М x Д,

где Х - масса сухих яиц артемии;
К - кормовой коэффициент по науплиусам артемии;
N - количество личинок рыб;
М - штучная масса одной личинки в конце подращивания;
Д - отношение массы заложенных на инкубацию сухих яиц к массе полученных науплиусов.

Суточная потребность в живом корме рассчитывается по формуле:

A = N x M x R,

где А - масса науплиусов, скармливаемых ежесуточно;
N - количество личинок рыб, подращиваемых на живом корме;
М - штучная масса одной личинки;
R - суточный рацион личинок в процентах от их массы.

Расчет же требуемого объема инкубационных аппаратов производится по формуле:

V = А / Р,

где V - объем аппаратов;
А - масса науплиусов, скармливаемых ежесуточно в конце подращивания;
Р - суточная продукция науплиусов с единицы объема аппаратов.

При хорошем качестве яиц артемии (всхожесть до 70%) величина Д равна 0,5. С уменьшением процента всхожести величина Д увеличивается, с увеличением процента всхожести - уменьшается. Кормовой коэффициент науплиусов артемии в Зависимости от условий подращивания колеблется от 2,5 до 3,5.

Для инкубации яиц артемии предложено много устройств. Одним из простейших и очень удобных в работе является обычный аппарат Вейса, сопряженный с системой подачи сжатого воздуха. В крупномасштабном производстве удобен аппарат, выполненный из оргстекла, с большой единичной емкостью (40- 100 л). Его можно использовать по прямому назначению для инкубации икры рыб, а также как инкубационный сосуд для яиц артемии, емкость для отмывки яиц артемии от скорлупы и песка, емкость для отделения науплиусов от невыклюнувшихся яиц и скорлупы, для передерживания полученных науплиусов.

При непрерывном производстве живых кормов необходимо иметь по меньшей мере два аппарата или две группы инкубационных аппаратов, заряжаемых с разницей в 24 ч. Это связано с тем, что съем продукции науплиусов производится спустя 48 ч после зарядки аппаратов.

Оптимальной Для выклева яиц артемии обычно называют температуру 25- 27°С. Действительно, если температура инкубационной среды ниже, то до начала выклева яиц потребуется больше вре- , мени, выклев будет растянутым, ухудшится всхожесть.

Опыт показывает, что необходимо поддерживать температуру инкубационной среды на уровне 30-31 С, при которой выклев наступает быстрее и имеет более интенсивный характер.

Поддерживать нужную температуру раствора можно, помещая электрообогреватели в инкубационные сосуды или же устанавливая сосуды в изотермический бокс (в простейшем случае - ящик, обитый теплоизоляционным материалом), в котором температура поддерживается с помощью обычных ламп накаливания. Конечно, в обоих случаях необходимы терморегуляторы.

В производственных условиях целесообразно разместить инкубационные аппараты в отдельном, хорошо отапливаемом помещении. Например, весной 1979 г. на рыбкомбинате "Бисеровский" инкубационные аппараты были размещены в бойлерной, что вообще сняло вопрос подогрева инкубационной среды, поскольку температура воздуха в этом помещении стабильно держалась на уровне 28-32°С и могла быть в некоторой степени управляема.

Продувка сжатым воздухом обеспечивает обогащение инкубационной среды кислородом, быстрое удаление образующейся углекислоты, не допускает накопления продуктов метаболизма в микрозонах, окружающих яйца, предотвращает оседание яиц на дне сосуда и создание в слое осевших яиц анаэробных условий.

Перемешивание яиц в инкубационных аппаратах сжатым воздухом исключает образование дефицита кислорода в среде. При плотности загрузки 10 г воздушно-сухих яиц на 1 л инкубационной среды и температуре 30°С содержание кислорода поддерживалось на уровне 5 мг/л, то есть вполне достаточном для инкубации.

Продувка сжатого воздуха производится через распылитель. Его подбирают с таким расчетом, чтобы обеспечить необходимое насыщение среды кислородом и интенсивность перемешивания яиц, Поэтому для аэрации в больших емкостях грубый распылитель предпочтительнее тонкого. К тому же очень тонкий распылитель требует в этих условиях высокого давления сжатого воздуха.

Необходимую интенсивность продувки определить просто; яйца должны находиться в движении в толще раствора, Если яйца оседают на дно, значит, продувка недостаточно интенсивна, что неизбежно приведет к резкому снижению продукции,

Получение науплиусов артемии в промышленных масштабах требует высокопроизводительного компрессора с ресивером, снабженным реле давления. Благодаря ресиверу сглаживаются скачки давления, не допускается попадание масла в инкубационные аппараты, создается щадящий режим работы собственно компрессора.

Яйца артемии заготавливают в различных по химизму водоемах. Обычной же инкубационной средой в производственных условиях является 3-5-процентный раствор поваренной соли. Лучше всего использовать неочищенную соль-сырец. Не следует применять очищенную йодированную поваренную соль.

Можно приготавливать растворы, взвешивая нужное количество соли, однако намного удобнее применять денсиметры, благодаря которым можно очень быстро без взвешивания и мерной посуды приготовить нужный раствор, а также проверить концентрацию используемых растворов. Достаточно эффективен денсиметр A3 1000-1400 (ГОСТ 1300-74). Им можно довести плотность инкубационной среды до 1020.

Рекомендуется иметь наготове необходимое количество насыщенного раствора соли-сырца, чтобы при работе не ожидать, пока растворится соль. Аккуратно сливая отстоявшийся насыщенный раствор, легко избавиться от загрязнений, остающихся на дне.

Сколько раз можно использовать для инкубирования однажды приготовленный раствор? На этот счет существуют разные мнения. Мы, например, использовали один и тот же раствор (с возмещением потерь свежим раствором) до девяти раз. Бактериальную загрязненность многократно используемой инкубационной среды мы не проверяли, однако снижения эффективности выклева не наблюдалось.

Лучше практиковать исходную плотность среды 1020, так как при высокой температуре инкубации, многократном использовании среды и интенсивном бврботаже сжатым воздухом происходит испарение воды из аппаратов и быстрое повышение концентрации соли в среде.

При получении науплиусов артемии все операции необходимо производить в строгой последовательности: приготовление инкубационной среды; заливка раствора в аппараты и регулировка всех систем в холостом режиме; загрузка активированных яиц в аппараты; корректировка функционирования систем в рабочем режиме и контроль за ходом инкубации; съем и учет продукции; промывка аппаратов водопроводной водой; повторная зарядка аппаратов.

Сразу после загрузки сухих яиц в инкубационную среду начинается их набухание. Вначале становится хорошо заметной полупрозрачная внешняя мембрана, лежащая поверх непрозрачного твердого, окрашенного коричневым пигментом хориона, сохраняющего еще некоторое время после начала набухания чашеобразное углубление. Набухшее яйцо артемии имеет сферическую форму.

Время наступления выклева, в основном, обусловлено температурным режимом. Сам процесс выхода науплиусов начинается с появления на скорлупе трещины, через которую выходит в виде язычка головная часть науплиуса. Хорошо заметен красный науплиальный глаз.

Через некоторое время в толще раствора видна масса вылупляющихся, заключенных в мягкие оболочки науплиусов, еще не полностью освободившихся от скорлупы, расположенной над каплевидмым науплиусом. Такое расположение объясняется тем, что в хорионе находится альвеолярный слой, имеющий многочисленные заполненные воздухом каналы. Он и обусловливает плавучесть оставляемой науплиусом скорлупы,

Аквариумисты на этой стадии развития называют науплиусов "парашютистами". Массовое появление на вторые сутки "парашютистов" - верный знак того, что инкубация идет хорошо.

Когда иауплиусы окончательно освобождаются от скорлупы яйца и мембран, обволакивающих их тело, они начинают активно двигаться. Средняя длина только что выклюнувшихся науплиусов - 0,45 мм, масса - 0,01 мг, цвет - от бледно-розового до ярко-красного.

По завершении массового выклева (обычно через 48 ч) прекращают подачу сжатого воздуха в инкубационные аппараты. Пустая скорлупа поднимается в верхние слои, большинство невыклюнувшихся яиц оседает, а науплиусы находятся в толще раствора. Науплиусов отлавливают, сливая раствор через сачок из сита № 60 вплоть до слоя пустой скорлупы. Можно перед скармливанием провести отловленных науплиусов через пресную воду для дополнительной очистки и отмывки от соли. При большом объеме емкости с рыбой или при хорошем водообмене соль, попадающая сюда с неотмытыми науплиусами, не приносит вреда.

Можно с успехом использовать яйца артемии, имеющие невысокую всхожесть (до 40%). В этом случае приходится увеличивать суммарную емкость инкубационных аппаратов и, что сложнее, принимать меры, чтобы отделить науплиусов от невыклюнувшихся яиц (последние, если их заглатывают личинки рыб, не перевариваются, что может привести к закупорке кишечника личинок).

Скапливаясь в емкостях с пресной водой, невыклюнувшиеся яйца загнивают, что также наносит вред. Отделение скорлупы от науплиусов артемии не представляет трудностей, сложнее отделить науплиусов от невыклюнувшихся яиц.

Предложенные к настоящему времени методы, в том числе разделение в столбе пресной воды или с использованием положительного фототаксиса, не удовлетворяют рыбоводов, особенно при использовании яиц с невысокой всхожестью и больших масштабах производства живого корма.

Учет отцеженных из определенного объема и подсушенных на фильтровальной бумаге науплиусов производится либо непосредственным их взвешиванием, либо подсчетом количества науплиусов в определенном объеме с последующим умножением на массу одного экземпляра. Величину суточной продукции обычно выражают в г/л. При инкубации яиц артемии в промышленных масштабах в рыбхозе "Сускан" величина продукции науплиусов достигала 25 г/л в сутки. Такой показатель, достигнутый в производственных условиях, указывает на широкие перспективы, открывающиеся перед рыбоводством на пути использования науплиусов артемии при подращиваиии личинок рыб.



Амбистома - аксолотль - амбистома
М. Зартавкин, Московский областной педагогический институт им. Н. К. Крупской, кафедра зоологии


Один из первых испанских путешественников рассказывал: "Близ города Мехико в озерах живут рыбы с мягкой кожею и четырьмя ногами, похожими на ноги ящерицы; эти рыбы бывают около локтя длиной и дюйма толщиной. Их называют аксолотлями. Это животное... поражает своим необыкновенным и странным видом. Мясо его похоже на мясо угря, здорово и вкусно, его едят жареным, вареным и печеным".

Кто же такой аксолотль? Что это за животное? Ответ, наверное, удивит многих. Оказывается, это личинка земноводного животного амбистомы. Но если аксолотль хорошо известен аквариумистам, то взрослое животное - амбистому мало кто знает.

Амбистома принадлежит к отряду хвостатых земноводных (Urodela, или Саudata). Семейство Ambystomatidae включает 5 родов, 28 видов. Происходит из Северной и Центральной Америки.

Аксолотль появился в России еще в прошлом веке и уже к концу его был широко распространен у аквариумистов. Тело длинное, толстое, как у тритона. Голова очень плоская, морда приплюснутая, рот широкий. С обеих сторон головы - по три пучка мохнатых жабр. Вдоль тела тянется полупрозрачный прямой гребень. Аксолотль имеет две пары ног, на передних ногах по четыре пальца, на задних - по пять. В аквариуме чувствует себя хорошо (это отмечал еще Золотницкий), почти не требует никакого ухода и может жить даже в мутной воде, содержащей мало кислорода. Время от времени поднимается к поверхности воды за воздухом, хотя может обходиться и без него и дышать растворенным в воде кислородом. В аквариуме аксолотль предпочитает уединяться в темных уголках, ведет малоподвижный образ жизни, часами может стоять на одном месте, совершенно не шевелясь. К людям привыкает быстро и иногда берет корм прямо из рук. Аксолотлей кормят крупным мотылем, кусочками сырого мяса и рыбы, дождевыми червями, моллюсками, насекомыми. Животные очень прожорливы и часто пытаются заглотить корма больше, чем помещается в глотке. Непроглоченную пищу они отрыгивают. Голодные аксолотли могут нападать на мелких рыб, тритонов, головастиков (последних весной можно использовать в качестве корма). Случается, что они отъедают друг у друга жабры, хвосты, лапы (все отъеденные части тела быстро регенерируют), а то и вовсе покушаются на жизнь своих собратьев.

Размножение аксолотля впервые удалось наблюдать в 1865 г. в Парижском ботаническом саду. Обычно оно происходит в апреле - мае. Оплодотворение у аксолотлей внутреннее. Самка захватывает клоакой отложенный самцом сперматофор, а затем в несколько приемов откладывает оплодотворенные яйца - по 20-30 штук, всего - до 500 яиц. В этот период она очень беспокойна. Самец же медлителен и ленив.

Размножение можно вызвать и искусственно в любое время года. Для этого нужно в течение 2-3 месяцев продержать аксолотлей в аквариуме без грунта и растений, с некоторым недостатком кислорода, а затем перевести их в хорошие условия.

В аквариуме, где размножаются аксолотли, необходимы растения и камни, к которым самка приклеивает яйца - крупные (диаметром до 4,2-5 мм), прозрачные, с черной точкой зародыша. Их следует сразу же удалить из аквариума, иначе они станут добычей самцов и будут полностью уничтожены. Оплодотворенные яйца рекомендуется держать в 20-литровом аквариуме вместе с растениями, помещенными на дно. Золотницкий (1890) советует инкубировать их на противне, наполненном водой и сверху прикрытом стеклом; в воде должны быть растения, преимущественно элодея. Оптимальная температура 18-20°С. Воду следует менять один раз в 3-4 дня. Яйца надо периодически просматривать и погибшие (помутневшие) удалять. В аквариуме погибшие яйца удалять необязательно.

Инкубационный период продолжается 3-4 недели. Затем оболочка лопается, и молодая личинка выходит из яйца. Длина ее - до 25 мм. Она снабжена жабрами, но ног еще нет. Задние ноги появляются через 1-2 недели, передние - только через 3-4 месяца. Тело молодых особей светло-зеленого цвета, с черными пятнышками.

Личинок надо хорошо кормить, иначе они плохо развиваются и медленно растут (иногда рост вообще прекращается). Нельзя и перекармливать - это может привести к их гибели.

Выкармливание начинают с "живой пыли" и инфузорий, затем в рацион включают циклопа и дафнию (вначале мелкую, позже - крупную) и, наконец, переходят на мелкого мотыля. Подросших личинок можно кормить так же, как взрослых аксолотлей.

Максимальных размеров личинки достигают обычно на втором году жизни. Во взрослую амбистому аксолотли превращаются крайне редко. При переходе в новую стадию аксолотль начинает все чаще подниматься к поверхности воды за воздухом. При этом его жабры постепенно уменьшаются и, наконец, вовсе исчезают. Исчезает и кожистая плавниковая складка хвоста. Аксолотль превращается во взрослую вмбистому и выходит из воды. Взрослое животное возвращается в воду только в период размножения, а затем вновь выходит на сушу.

В условиях неволи также можно провести это превращение. Молодых личинок в возрасте, когда у них уже есть передние и задние ноги, надо поставить в такое положение, чтобы они были вынуждены соприкасаться с атмосферным воздухом.

Впервые это попытался сделать в прошлом веке профессор Вейсман, но свою идею ему так и не удалось претворить в жизнь. Несколько лет спустя известная естествоиспытательница Мария де Шовен получила из аксолотля амбистому. В ее эксперименте часть аквариума была наполнена водой так, чтобы аксолотль мог погружаться в нее только в одном месте. При ползании ему приходилось часто соприкасаться с поверхностью воды и с атмосферным воздухом. На сухом участке аквариума находился влажный мох. Количество воды в аквариуме понемногу снижали. В таких условиях животное начало претерпевать изменения: жабры постепенно уменьшились, а затем - и совсем исчезли и, наконец, оно вышло из воды на влажный мох.

После превращения аксолотля во взрослую амбистому происходит первая линька кожи. Гребень на спине пропадает, в широкий хвост приобретает округлую форму. Изменяется цвет кожи. Жаберные отверстия постепенно зарастают. Толчком к метаморфозу может служить и недостаток пищи, понижение температуры воды и другие неблагоприятные условия.

Профессор Ле-Вальян поставил перед собой еще более сложную задачу - размножить взрослых амбистом в неволе. Его примеру последовала и Мария де Шовен, и в 1879 г. ей это удалось.

Происходит это следующим образом. Заметив половое влечение животных, надо поместить их в просторный аквариум, где есть и сухая почва с растительностью, и вода. В это время амбистомы предпочитают воду. Животные сильно раздражены и яростно преследуют друг друга. Малейший шум пугает их. Самцы выметывают сперматофоры, самки клоакой захватывают их и мечут яйца, прикрепляя к камням и растениям. Это продолжается 2-3 дня, после чего животные выходят на сушу и укрываются в растительности. Яйца амбистом выглядят так же, как и яйца аксолотлей.

На окраску аксолотлей сильно влияет свет. Выращивание молодых личинок в полной темноте или при красном свете дает более темную окраску, чем при желтом свете или дневном освещении. Среди аксолотлей известны и альбиносы.

В аквариуме чаще всего встречаются аксолотли тигровой, или североамериканской, амбистомы (Ambystoma tigrinum Green). Сама она окрашена в бурый или черный цвет, с желтыми, желто-зелеными и желто-бурыми пятнами. Аксолотли же имеют самую различную окраску. Нередко можно встретить выведенных искусственно аксолотлей-альбиносов мелочно-белого цвета с красными жабрами.

Некоторые подвиды этого вида отличаются тем, что метаморфоз у них не начинается вовсе и они никогда не переходят во взрослую стадию. Их амбисто,мы долгое время не были известны.

Кроме тигровой, имеются и другие виды амбистом: мраморная - A. opacum, кротовидная - A. talpoideum Holl., мексиканская - A. mexicanum !_., тусклая - A. punctatum, олимпийская - Phyacotriton olympicus L.

В отличие от аксолотлей, ведущих малоподвижный образ жизни, амбистомы довольно проворны и часто хорошо лазают по деревьям.



Лепоринусы
А. Кочетов


Около сорока родов рыб семейства малоротых (Anostomidae) населяет пресные воды Южной Америки. Из них довольно интересны обитатели зарослевых участков рек - лепоринусы (Leporinus Agassiz, 1829). Девять видов этих довольно крупных рыб содержатся в неволе. Самый крупный - лепоринус Фредерика вырастает до 35 см, самый мелкий - пятнистый лепоринус не превышает 10 см. Из представителей этого рода особенно красивы, на наш взгляд, L. striatus Kher, 1859, и L. fasciatus Bloch, 1794,- полосатый лепоринус.

Для всех лепоринусов свойственна вытянутая сигарообразная форма тела, крошечный, соотносительно с туловищем, рот с едва выдающейся нижней челюстью. Движения рыб замедленны. В спокойной обстановке они похожи на зависшие дирижабли. Но малая подвижность сочетается у них с высокой маневренностью, и поймать их не так-то просто.

В природе (бассейны Амазонки, Ориноко, Ла-Платы) лепоринусы держатся близко от берега, у островков расти- тельности, изредка выходя на открытые места. Их излюбленная пища - молодые побеги водной растительности, но при случае они могут поедать и личинок насекомых и другие кормовые организмы. К аквариумам рыбы приспосабливаются легко, но из-за отсутствия простора мельчают. Затянувшиеся особи, естественно, не созревают, из-за чего лепоринусов причисляют к разряду практически не разводимых рыб. Отдельные, спонтанные, нересты не дают полного представления об этой стороне их жизни. Правда, японскому рыборазводчику Хироши Азума удалось развести пятнистого лепоринуса (L. maculatus Muller, Troschel, 1845). Метод Азума заключается в следующем. Разводчик приобретает значительное количество рыб, которых тщательнейшим образом выращивает для целей разведения. Из полученного потомства он выбирает оптимальных производителей, которые успешно нерестятся. Весьма вероятно, что дело не обходится без стимуляции гормональными препаратами.

Содержать лепоринусов нетрудно, они одинаково хорошо чувствуют себя и в мягкой и в жесткой воде, с кислой и слабощелочной реакциями, при температуре от 22 до 32°С. В аквариуме Московского зоопарка полосатый лепоринус прожил почти десять лет, питаясь летом шинкованным салатом и листьями одуванчика, а зимой - мотылем, кусочками мясного фарша, пастой "Океан". Лепоринусы - рыбы крепкие, устойчивые против заболеваний. Но заболев, очень плохо реагируют на лечение красителями и марганцовокислым калием (даже в половинных дозах).

Лепоринусы весьма эффектно смотрятся в больших аквариумах, в соседстве с крупными рыбами разнообразных форм.



Перламутровый лампрологус
А.Кочетов


Озеро Танганьика еще в прошлом веке было неофициально объявлено крупнейшей природной сокровищницей уникальной ихтиофауны.

К числу особенно интересных "танганьикцев" относятся представители рода Lamprologus, ведущие свое начало от ископаемых хаплохромисов. На сегодняшний день известно, по крайней мере, 34 вида этих рыб (по 14 из них впервые описаны Боуленгером и Поллом). Огромную популярность у нас в стране с 1972 г. завоевал лампрологус с броским, но, надо сказать, заслуженным прозвищем - "принцесса Бурунди" (L. brichardi). До недавнего времени этот вид пребывал в "гордом одиночестве". Лишь в 1977 г. в Московский зоопарк попали три восьмисантиметровых экземпляра другого вида лампрологусов - L. tetracanthus Boulonger.

Несмотря на отсутствие в окраске тетракантусов таких удивительных цветовых сочетаний, как у цитронового лампрологуса (L. leleupi), или оригинальности в строении тела, свойственной цихлиде-фее (L. compressiceps), они все же сразу привлекают к себе внимание. Рыбка очень изящна. Тело ее окрашено в светло-коричневый цвет, по которому как бы рассыпаны сверкающие золотисто-серебряные блестки. Плавники также покрыты блестками и имеют оригинальное окаймление: молочно-белое внизу и бархатно-черное вверху.

По окраске практически невозможно отличить самца от самки. Правда, самки мельче, угловатее. В преднерестовый период приобретают округлые формы и стараются обособиться где-нибудь в укрытии из камней.

Из обитателей оз. Танганьика по экстерьеру и расцветке к L. tetracanthus ближе всего L. attenuatus, L. callipterus и L. cunningtoni.

По характеру питания в природе лампрологусы - типичные монофаги, поедающие разнообразных моллюсков. Поэтому при содержании в аквариумах одной из первоочередных становится проблема правильного кормления. Несмотря на узость пищевого спектра, лампрологусы быстро привыкают к стандартному аквариумному меню (крупная дафния, мотыль, коретра, трубочник). Однако на такой диете рыбы очень часто не созревают. Выход один; оптимизировать задаваемый корм, по возможности приблизив его к природным потребностям вида. Отличные результаты дает добавка к основому рациону филе морского гребешка, кальмара, креветочного мяса с примесью микроколичеств сладкого перца - источника каротиноидов.

Для успешного разведения L. tetracanthus необходимо соблюдать такие правила. Рыб следует вырастить до взрослого состояния, без отставания их в росте. На нерест пару надо сажать в аквариум, емкость которого не менее 150 л. Лучше вообще содержать их отдельно от других рыб. Корм должен быть разнообразным и обильным (лампрологусы обычно не жиреют). Фильтрацию воды надо сочетать с постепенной заменой ее на свежую (полная замена воды должна произойти в течение двух недель). Необыкновенно высокая чувствительность к малейшим изменениям рН у роскошного голубого с черными контрастными полосами L. tretocephalus не позволяет пока еще широко внедрить его в аквариумную культуру.

Половой зрелости L. tetracanthus достигают на втором году жизни при длине 12 см. У этих рыб довольно длительный преднерестовый период, отличающийся многообразием ритуальных позиций производителей. Самка откладывает несколько сотен икринок матового цвета в глубине пещер или глухих, не имеющих второго выхода, труб. Производители попеременно ухаживают за будущим потомством, при этом у них наблюдается повышенная агрессивность. Они с яростью набрасываются на любой предмет, оказавшийся в непосредственной близости от гнезда. Температура воды в период нереста 26-28°С, рН около 8, жесткость 15°. Из отложенной икры нередко сохраняется только 30%. При выкармливании молоди в аквариуме постоянно должны присутствовать планктонные организмы.
Rambler's
Top100 АРГ - производство аквариумов